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Mycobacterium tuberculosis bactéries

Mycobacterium tuberculosis

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Mycobacterium tuberculosis sur milieu de Löwenstein-Jensen après 6 semaines de culture, 37°C. Colonies typiques non pigmentées, rugueuses et sèches sur milieu de Löwenstein-Jensen. La couleur verte du milieu est due à la présence de vert malachite qui est l’un des agents sélectifs empêchant la croissance de la plupart des autres contaminants. Contrairement à de nombreux autres milieux de culture solides utilisés en microbiologie clinique, le milieu de Löwenstein-Jensen (ou par exemple le milieu d’Ogawa) ne contient pas d’agar (la consistance solide est obtenue par coagulation thermique de l’albumine d’œuf).
Mycobacterium tuberculosis (MTB) est une espèce bactérienne pathogène du genre Mycobacterium et l’agent causal de la plupart des cas de tuberculose. Découvert pour la première fois en 1882 par Robert Koch, M. tuberculosis possède un revêtement cireux inhabituel à la surface de ses cellules (principalement de l’acide mycolique), ce qui les rend imperméables à la coloration de Gram ; on utilise plutôt des techniques d’acidification. La physiologie de M. tuberculosis est fortement aérobie et nécessite des niveaux élevés d’oxygène. Principalement un pathogène du système respiratoire des mammifères, MTB infecte les poumons, provoquant la tuberculose.
M. tuberculosis a besoin d’oxygène pour se développer. Elle ne retient aucune coloration bactériologique courante en raison de la forte teneur en lipides de sa paroi, et n’est donc ni Gram-positive ni Gram-négative ; c’est pourquoi on utilise la coloration de Ziehl-Neelsen, ou coloration acido-basique. Bien que les mycobactéries ne semblent pas correspondre à la catégorie des bactéries à Gram positif d’un point de vue empirique (c’est-à-dire qu’elles ne retiennent pas la coloration au cristal violet), elles sont classées comme des bactéries à Gram positif acidophile en raison de leur absence de membrane cellulaire externe.
M. tuberculosis se divise toutes les 15 à 20 heures, ce qui est extrêmement lent par rapport aux autres bactéries, qui ont tendance à avoir des temps de division mesurés en minutes (Escherichia coli peut se diviser environ toutes les 20 minutes). Sa paroi cellulaire inhabituelle, riche en lipides (acide mycolique, par exemple), est probablement à l’origine de cette résistance et constitue un facteur de virulence essentiel.Lorsqu’elle se trouve dans les poumons, M. tuberculosis est absorbée par les macrophages alvéolaires, mais ceux-ci sont incapables de digérer la bactérie. Sa paroi cellulaire empêche la fusion du phagosome avec un lysosome. Plus précisément, M. tuberculosis bloque la molécule de liaison, l’auto-antigène endosomal précoce 1 (EEA1) ; toutefois, ce blocage n’empêche pas la fusion des vésicules remplies de nutriments. Par conséquent, les bactéries se multiplient sans contrôle à l’intérieur du macrophage.

Culture
M. tuberculosis est cultivé sur un milieu sélectif connu sous le nom de milieu de Löwenstein-Jensen, qui a traditionnellement été utilisé à cette fin. Cependant, cette méthode est assez lente, car cet organisme a besoin de 6 à 8 semaines pour se développer (croissance des colonies isolées en plus de 7 jours), ce qui retarde la communication des résultats. Un résultat plus rapide peut maintenant être obtenu en utilisant le milieu Middlebrook ou BACTEC.

Abrégé à partir de Wikipédia

Caractéristiques de base de Mycobacterium tuberculosis

  • Rougeons acidifiés
  • NONMOTILE
  • NON-SPORE-FORMANT
  • CATALASE : POSITIVE**
  • OXIDASE : NÉGATIVE
  • AÉROBES
  • ** certaines souches résistantes à l’isoniazide de M.tuberculosis peuvent être négatives

Identification de Mycobacterium tuberculosis

  • Mycobactérie à croissance lente (croissance des colonies isolées en plus de 7 jours)
  • Non pigmentée, colonies rugueuses et sèches sur milieu de Löwenstein-Jensen
  • Acide-fast (coloration de Ziehl-Neelsen ou de Kinyoun)
  • Non-photochromogène
  • Le test à la niacine : positif
  • Le test de réduction des nitrates : positif
  • Croissance sur TCH (hydrazide d’acide thiophène-2-carboxylique) ; 10µg/ml : positif, résistant au TCH (contrairement à M.bovis)
  • Croissance sur gélose pyrazinamidase (PZA) ; 25µg/ml : négatif
  • Le test à l’arylsulfatase (test des 3 jours) : négatif

Traitement de Mycobacterium tuberculosis

Les tests de sensibilité au moins pour l’INH, le RIF et l’EMB doivent toujours être effectués ! !! Les médicaments ne sont pas utilisés seuls ! !! (Pourquoi ?)

    Médicaments de première intention

  • Isoniazide (INH)
  • Ethambutol (EMB)
  • Pyrazinamide (PZA)
  • Rifampicine (RIF) (RMP/RIF)
  • Septomycine** (SM/STM)

** Aux Etats-Unis seulement, la streptomycine n’est plus considérée comme un médicament de première intention par l’ATS/IDSA/CDC en raison des taux élevés de résistance.
Médicaments de secondeligne (exemples)
Les médicaments de seconde ligne sont uniquement utilisés pour traiter les maladies résistantes au traitement de première ligne

  • amikacine (aminoglycosides)
  • kanamycine (aminoglycosides)
  • ciprofloxacine (quinolones)
  • cyclosérine.
  • Pour en savoir plus, visitez Wikipédia

  • Liste des antibiotiques (Wikipédia)

Le traitement standard « court » de la tuberculose est l’isoniazide (ainsi que le phosphate de pyridoxal pour éviter la neuropathie périphérique causée par l’isoniazide), rifampicine (rifampin aux Etats-Unis), pyrazinamide et éthambutol pendant deux mois, puis isoniazide et rifampicine seuls pendant quatre mois supplémentaires. Le patient est considéré comme exempt de bactéries vivantes au bout de six mois (bien qu’il existe toujours un taux de rechute pouvant atteindre 7 %).

Mycobacterium tuberculosis sur milieu Löwenstein-Jensen

morphologie des colonies de mycobacterium tuberculosis sur milieu L-Jensencroissance de mycobacterium tuberculosis sur milieu Löwenstein-Jensen(L-J)m.tuberculosis sur milieu Löwenstein-Jensenmilieu L-J et morphologie des colonies de mycobacterium tuberculosismycobacterium tuberculosismycobacterium tuberculosis, MTmycobacterium tuberculosis coloniesmycobacterium tuberculosis sur L-Jmycobacterium tuberculosis caractéristiques morphologiquesclose-up of a Mycobacterium tuberculosis culturemycobacterium tuberculosis culture close-upM.tuberculosis colony close-upmycobacterium tuberculosis close-upM.tuberculosis croissance confluentemycobacterium tuberculosis sur milieu Löwenstein-Jensenmilieux de culture pour mycobacterium tuberculosismycobacterium tuberculosis sur milieu Ogawa et Löwenstein-Jensen

Culture de Mycobacterium tuberculosis

culture de mycobacterium tuberculosis sur MB/Bactbouillon Middlebrook 7H9 pour MB/Bact

Mycobacterium sp.

mycobacterium fortuitum coloniesmycobacterium fortuitum sur milieu Ogawamycobacterium vaccaemycobacterium fortuitum, consistance des colonies de mycobactériesmycobacterium gordonaemycobacterium kansasii

Transcription acido-fast (Ziehl-Neelsen & coloration de Kinyoun)

échantillon de culture de mycobactéries à coloration de type acideenregistrement en mycobactériesm.tuberculosis coloration ziehl-neelsenmycobacterium tuberculosis coloration Z-Nmycobacterium tuberculosis dans les expectorations, Z-Nm.tuberculosis, bacille de Koch, bacilles acido-alcooliques's bacillus, acid fast rodscoloration ziehl-neelsen des bactéries non acido-alcooliquesbactéries acido-alcooliques et non acido-alcooliques, micrographiecoloration de Kinyoun's stain

Mycobacterium tuberculosis SEM &. Illustrations 3D

mycobacterium tuberculosis semmycobacterium tuberculosis, acid-fast rodsmycobacterium tuberculosis, acid-fast rods

Liens utiles

WIKIPEDIA

  • Mycobacterium spp.
  • Mycobacterium tuberculosis
  • Tuberculose
  • Vaccination

CENTRES DE CONTRÔLE ET DE PRÉVENTION DES MALADIES (CDC)

    .

  • Faits élémentaires sur la tuberculose
  • Dépistage & Diagnostic
  • Dépistage de la tuberculose (TB)
  • Traitement de la tuberculose ; Société américaine de thoracologie, CDC et Société des maladies infectieuses d’Amérique
  • Librairie des microbes

  • La coloration acido-basique

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