Acariens Cheyletiella : Population en mouvement

Les acariens Cheyletiella (pellicules ambulantes) sont devenus une épidémie dans notre cabinet du Midwest en été, avec des chiffres endémiques tout au long de l’année.

Si vous pensez que Cheyletiella est un acarien du passé, détrompez-vous. Dans notre cabinet, nous voyons plus d’acariens Cheyletiella que de puces. Il y a fort à parier que si vous n’avez pas diagnostiqué cet acarien, vous êtes probablement en train de le rater.

La Cheyletiella existe depuis 1878, date à laquelle elle a été diagnostiquée pour la première fois chez un lapin. Le premier diagnostic chez un chien a été fait en Autriche. Depuis, elle a été signalée chez des chiens, des chats, des renards, des blaireaux, des humains et existe probablement chez d’autres animaux sauvages.

C. yasguri se trouve chez les chiens, C. parasitivorax chez les lapins et C. blakei chez les chats. Toutes les espèces peuvent affecter transitoirement l’homme – sous le nom de Cheyletosis. Une ancienne théorie voulait que les acariens soient des prédateurs d’autres ectoparasites, comme les puces, les poux et les mouches. On pense maintenant que Cheyletiella est un véritable parasite du chien, du chat et du lapin. Un rapport affirme que la plupart des lapins domestiques sont porteurs de Cheyletiella mais ne présentent pas de symptômes.

L’acarien est contagieux par contact direct. Il n’est pas fouisseur et se nourrit de la couche de kératine de l’épiderme. On le trouve le plus souvent sur le dos, pourtant C. blakei se nourrit du pelage des chats.

Les acariens Cheyletiella sont de grande taille (466 à 500 microns sur 300 microns de large) et dans certains cas visibles à l’œil nu. Ils sont jaunes, avec quatre paires de pattes et les griffes palpales caractéristiques à forte courbure.

Les œufs (190 à 260 microns de long), parfois embryonnés, sont fixés aux poils par des filaments en forme de cocon et sont souvent confondus avec les œufs d’ankylostomes mais sont trois fois plus gros. Le cycle de vie dure 21 jours et comprend cinq stades : œuf, pré-larve, larve, stade de la première et de la deuxième nymphe et adulte.

Une fois que l’exposition a lieu, il faut parfois trois à cinq semaines pour que l’infestation se développe. L’acarien femelle est capable de vivre de son hôte dans l’environnement pendant 10 jours.

La présentation clinique la plus courante chez le chien est un prurit avec une desquamation dorsale du tronc. Cependant, comme il a été rapporté qu’il peut y avoir une séquestration nasale de l’acarien, un prurit facial, une excoriation, des éternuements et une atteinte périoculaire ont été observés. Les jeunes chiens peuvent être plus affectés. Chez les chiens et les chats, j’ai vu des patients plus âgés avec d’autres problèmes de médecine interne affectés plus souvent.

Comme elle est contagieuse, il faut se méfier des patients qui vont chez les toiletteurs ou dans les chenils où il y a une association avec d’autres animaux de compagnie. Chez les chats, des prurits avec des lésions de type dermatite miliaire, lésions du complexe granulome éosinophile, prurit facial et éternuements ont été rapportés. N’oubliez pas de vérifier tous les animaux de la maison, car il peut y avoir des porteurs asymptomatiques. Nous avons eu un chien qui a été diagnostiqué comme « porteur chronique d’ankylostomes » qui avait en fait des acariens Cheyletiella et les œufs d’acariens ont été confondus avec des œufs d’ankylostomes dans l’examen fécal.

Les humains peuvent être affectés par des lésions papuleuses, avec une zone de nécrose centrale.

Méthodes de diagnostic

Le diagnostic des acariens Cheyletiella peut être délicat car il dépend de la découverte de l’acarien ou de l’œuf sur le patient ; cela est moins probable s’il vient d’être baigné. Les méthodes de diagnostic comprennent les peignages/brossages, la bande acétate, la flottation fécale, la biopsie cutanée et le test de l’aspirateur.

Chez le chat, les peignages peuvent être négatifs dans 58 % des cas. A l’aide d’un peigne à puces, recueillir les phanères près de la peau, et non aux extrémités distales des poils. Observer les phanères dans l’huile sous faible puissance. Les peignages peuvent être effectués via une méthode de flottaison fécale utilisant la centrifugation et l’observation des œufs/acariens flottant dans l’huile après l’avoir laissé remonter à la surface au bout de 10 minutes.

La méthode du ruban acétate est plus efficace pour détecter les acariens en cas de forte infestation. Encore une fois, il faut obtenir l’écaille à côté de la peau et non aux extrémités distales des cheveux. Le côté collant du ruban avec les phanères collés est fixé sur une lame de microscope en verre et observé à faible puissance.

Les flottaisons fécales peuvent donner des œufs de Cheyletiella qui ressemblent aux œufs d’ankylostomes mais sont trois fois plus gros. Un rapport en Norvège a utilisé une méthode spéciale d’aspirateur pour détecter les acariens ; ils ont estimé que c’était la plus précise de toutes les méthodes.

Avec une biopsie cutanée, si l’acarien est capturé dans l’échantillon, c’est un diagnostic. Dans le cas contraire, il n’est que suggestif. Les résultats d’une biopsie cutanée d’un patient atteint de Cheyletiella comprennent une acanthose épidermique avec une hyperkératose orthokératosique modérée à sévère, un infiltrat inflammatoire mixte du derme superficiel avec des éosinophiles, des lymphocytes, des histiocytes et des plasmocytes et un œdème variable. Le nombre d’éosinophiles peut être déclassé, en fonction de la corticothérapie antérieure.

Therapies

Il existe différentes thérapies topiques et systémiques pour les acariens Cheyletiella. Elles doivent inclure le traitement de tous les animaux exposés ainsi que des traitements environnementaux appropriés.

Les traitements topiques pour les chiens et les chats comprennent des trempages au chaux-soufre tous les cinq à sept jours pendant trois à quatre applications, des shampooings à la pyréthrine chaque semaine pendant trois à quatre semaines ou le spray Frontline (1 pschitt/lb de poids corporel toutes les trois semaines pendant deux applications).

En raison de la séquestration nasale des acariens, les thérapies systémiques sont probablement plus efficaces.

Les choix de thérapie systémique pour les chiens comprennent :

• Ivermectine 200 mcg/kg SQ ou par voie orale une fois par semaine pendant trois semaines (Le chien doit d’abord être négatif pour le ver du cœur et ne pas être une race de troupeau ou un berger allemand blanc. Utiliser avec précaution chez les chiens âgés de toute race.)

• Interceptor à 1 mg/kg tous les deux jours pendant 14 jours ou 1 mg/lb de poids corporel une fois par semaine pendant trois semaines (le chien doit être heartworm-.négatif avant de l’utiliser)

• Advantage Multi une fois par mois pendant deux mois

• Revolution un tube en topique tous les 15 jours pendant trois traitements

• Amitraz dips une fois par semaine pendant trois semaines ou toutes les deux semaines pour deux dips

Les choix de thérapie systémique pour les chats :

• Ivermectine 200 mcg/kg SQ une fois par semaine pendant trois semaines ou toutes les deux semaines pour deux doses

• Interceptor 1 mg/lb une fois par semaine pendant trois à quatre semaines

• Revolution un tube en topique tous les 15 jours pour trois doses

Les traitements pour l’une ou l’autre espèce doivent tenir compte de la condition physique de l’animal.

Les patients présentant une maladie sous-jacente en médecine interne doivent se voir prescrire le traitement le plus sûr pour leur état.

On pensait autrefois qu’ils étaient peu fréquents, les acariens Cheyletiella ont refait surface en grand nombre.

Comme il y a eu des progrès dans le traitement des puces avec de nouveaux produits plus faciles et plus sûrs, peut-être assistons-nous à une résurgence de ces populations de parasites.

Je suis certain qu’une fois que vous commencerez à vérifier systématiquement les animaux de compagnie, même si c’est juste pour peigner les puces de chaque patient, vous pourriez être surpris de ce que vous trouverez.

Le Dr Jeromin est pharmacienne et dermatologue vétérinaire en cabinet privé à Cleveland, dans l’Ohio. Elle est diplômée en 1989 du Collège de médecine vétérinaire de l’Université de l’État de l’Ohio et professeur auxiliaire au Collège de médecine de l’Université Case Western Reserve à Cleveland.